悬浮细胞的瞬时转染操作

悬浮细胞的瞬时转染操作

  知道悬浮细胞的瞬时转染操作有什么吗?让我们一起来看看吧!
  一、细胞转染前的准备
  1、细胞:
  贴壁生长细胞:一般要求在转染前一日,必须应用胰酶处理成单细胞悬液,重新接种于培养皿或瓶,转染当日的细胞密度以70-90%(贴壁细胞),最好在转染前2-4 h换一次新鲜培养液。
  悬浮细胞:转染前12-16 h进行悬浮细胞传代,传代后适宜的细胞密度为20-40×104/mL。台盼蓝染色进行活细胞计数保持活细胞比在95%以上。
  提前将293F细胞的密度调整至合适的密度后(2×106-4×106细胞/ml)于37℃摇床培养2-4 h后进行转染。注意,参与转染的细胞必须是培养三代或以上的稳定细胞株。
  2、DNA:
  使用去内毒素质粒大提试剂盒提取质粒,于生物安全柜/超净台用0.22μm滤头过滤除菌。
  3、稀释液:
  于生物安全柜/超净台用0.22μm滤头过滤除菌。
  4、转染试剂:
  转染试剂如PEI溶液长期储存于-20℃,不可反复冻融,溶液在4℃放置不超过一周。
  二、操作步骤(悬浮细胞)
  1、取一支已灭菌的Ep管,加入一定量的DNA,以相应体积的300 mM NaCl稀释,用枪头混匀后静置5 min;
  另取一支已灭菌的Ep管,加入相应体积的300 mM NaCl稀释对应体积的PEI溶液用枪头混匀后静置5 min(稀释液与DNA、PEI的总体积应为转染体积的5%)。
  将质粒和PEI溶液混合,枪头混匀后静置一段时间,使DNA与PEI形成稳定的聚合物。
  2、从摇床中取出293F细胞。用1 mL移液枪滴缓慢滴加转染混合液,边加边摇晃摇瓶使转染更加充分。
  3、转染后将悬浮细胞置于摇床中培养,条件为37℃、8%CO2、110 rpm。每隔24 h进行细胞计数并用台盼蓝染色液观察细胞的存活率。
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细胞瞬时转染的原理

细胞瞬时转染的原理

  哺乳动物细胞瞬时转染能在短期内快速表达高活性蛋白而被广泛应用。那么细胞瞬时转染的原理是什么?让我们一起来看看吧!
  哺乳动物细胞自身具有蛋白折叠和翻译后修饰的功能,获得的蛋白更具有天然活性。哺乳动物细胞生产蛋白的方式有两种:瞬时转染和稳定转染。瞬时转染的特点是短期快速表达,满足蛋白的小量制备。而稳定转染通过构建稳定细胞系能够满足蛋白的大量、长期生产。
  瞬时转染的原理是指将构建好的质粒通过某种方式导入到哺乳动物细胞内,该质粒上的外源基因不整合到细胞自身的基因组上。随着细胞的生长分裂,外源基因会逐渐丢失。质粒在细胞内能够存在3-4天,此时间内,质粒外源基因在细胞内发生转录翻译,得到极为少量的蛋白。这一整个快速转染得到蛋白的过程就称为瞬时转染表达。
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细胞稳定转染和瞬时转染有哪些区别?

细胞稳定转染和瞬时转染有哪些区别?

在细胞实验中,细胞转染是一项常用的技术,用于引入外源基因、表达蛋白或沉默目标基因等。其中,细胞的稳定转染和瞬时转染是两种常见的转染方式。细胞稳定转染和瞬时转染有哪些区别?让我们一起来看看吧!

类别

特点

适用范围

  

稳定转染

长期稳定表达目标基因

长期功能研究和稳定表达需求的实验

可通过筛选和扩增获得稳定表达的细胞系

长期细胞培养和细胞系建立

使用脂质体、病毒载体或DNA转染等方法

大规模蛋白表达和基因敲入研究

  

瞬时转染

快速实现临时的基因表达

短期功能研究和临时表达需求的实验

无需筛选和扩增细胞系

短期细胞培养和快速结果分析

使用脂质体、磷酸共沉淀或电穿孔等方法

功能验证、药物筛选和基因敲除实验

一、稳定转染

类别:质粒转染、病毒转染(包括慢病毒、腺病毒等)

优点:长期稳定表达目标基因,适用于长期研究和功能验证,适合蛋白表达与纯化、药物筛选等实验

缺点:构建过程耗时,筛选稳定细胞系可能困难

操作步骤:

★ 选择合适的载体(质粒或病毒载体)和转染方法(化学转染、电穿孔等)

★ 将目标基因导入目标细胞中

★ 筛选和鉴定稳定转染细胞系

★ 进行功能验证和后续实验

二、瞬时转染

类别:siRNA 转染、蛋白转染、化学转染等

优点:快速实现目标效应,适用于短期实验和基因沉默研究,操作相对简单

缺点:效应具有瞬时性,不适用于长期稳定表达或长期功能研究

操作步骤:

★ 设计合适的 siRNA 序列(对于 siRNA 转染)

★ 选择适当的转染试剂和方法

★ 转染目标细胞并培养一定时间以观察效应

★ 进行基因沉默或目标蛋白的功能研究

稳转和瞬转并不是互斥的,而是根据实验需求和目的的不同选择不同的转染方式。

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PEI瞬时转染试剂代理商

上海金畔生物科技有限公司是PEI瞬时转染试剂代理商 ,欢迎访问官网了解更多产品信息和订购。
PEI瞬时转染试剂

详情介绍

产品名称:PEI瞬时转染试剂

产品简介:
PEI线性转染试剂(PEI Prime Powder, Transfection Grade Linear Polyethylenimine):PEI Prime是以一种阳离子高分子聚合物-聚乙烯亚胺(polyethylenimine,PEI)为载体的基因转染试剂。PEI是在pH中性溶液中具有*正电荷密度的合成聚合物。带正电的PEI与带负电的DNA牢固结合,并赋予净阳离子电荷,使DNA进入细胞。PEI Prime是一种高性能转染试剂,利用PEI的特性旨在实现高产量,可重复性和可扩展的瞬时基因表达。

应用范围:

PEI转染试剂能够高效率转染多种细胞系,包括贴壁细胞和悬浮细胞。此外,PEI是用于HEK293和CHO悬浮细胞转染的试剂。PEI转染试剂是生产任何具有成本效益的生物制剂的合适选择,包括重组蛋白,抗体和病毒。

PEI线性转染试剂产品优势:

1. 低毒,高效

2. 操作简单,高性价比

3. 可提供可靠、具有可重复性的转染结果

4. 适用于快速、高通量转染流程

转染步骤:

-以HEK293贴壁细胞为例,步骤如下:

1. 细胞接种:细胞密度2-6 x106 cells/mL。

2. 质粒的准备:在5%最终培养体积的DMEM或培养基中,每106个细胞稀释1.0 ug pDNA。

3. PEI的准备:在5%最终培养体积的DMEM或培养基中,每106个细胞稀释3.0 ug PEI Prime,混匀。

4. 通过快速,短暂涡旋或颠倒数次试管,将pDNA和PEI Prime溶液混合在一起。

5. 使pDNA和PEI的混合物在室温下静置10分钟。

6. 一边旋转板,一边将pDNA和PEI混合物逐渐滴加到细胞中。

7. 于37℃ CO2培养箱中培养。

转染的优化:

为达到高转染效率和低细胞毒性的理想结果,可以进行如下优化:

参数

范围

PEI浓度

3.50-6.50mg/(L final culture)

DNA浓度

0.75-1.5mg/(L final culture)

PEI/DNA混匀时间

5.0-15.0minutes

与市场同类品牌的PEI转染效率的对比:

使用PEI Prime(PEI:DNA浓度比3:1)或某国外品牌PEI,用CMV-SEAP质粒转染20ml 含HEK293悬浮细胞的培养物。 转染后5天,使用磷酸酶报告染料和UV / Vis检测SEAP表达水平。数据表示占某国外品牌PEI的SEAP表达水平的百分比。结果显示我们的PEI Prime 的转染效率比国外同类厂家高出40%。


细胞转染:瞬时转染和稳定转染及转染效率影响因素

细胞转染:瞬时转染和稳定转染及转染效率影响因素

真核蛋白表达细胞转染方式有两种:瞬时转染和稳定转染,本文的主要介绍了两者的定义和适用性及细胞转染一般步骤,影响转染效率的因素,帮助我们提高实验的成功率。

在哺乳动物细胞蛋白表达实验,根据不同的实验目的,将质粒导入细胞有两种方法:瞬时转染和稳定转染。细胞转染是将外源基因导入真核细胞的过程。质粒、DNA、RNA将这些外源基因导入到真核细胞内并不容易,要跨越细胞膜的屏障进入细胞质。

瞬时转染

瞬时转染是指外源基因导入到细胞后得以表达,但是基因不整合到细胞的基因组上,因此不会随着细胞的生长复制。因此,瞬时转染的时间有限,通常只持续几天,直到外源基因在细胞生长分裂过程中因各种因素消失为止。判断细胞是否转染成功,在构建质粒上含有报告基团,以指示目标基因是否存在,一般在转染两天后即能被检测到。

稳定转染

稳定转染是在瞬时转染的基础上,瞬时转染时有一小部分的基因会整合到细胞基因组上,并随着细胞的生长分裂,质粒会随机分配到子细胞中从而稀释直终丢失,所以稳定转染要进行稳定细胞系的筛选,经过筛选出来的细胞株,此时的质粒已经*整合到细胞基因组中,随着细胞的生长复制并稳定的遗传给后代。

瞬转稳转适用性

瞬时转染表达和稳定转染表达显著的区别就是在时间上。瞬时转染在转染后四天即能收获细胞,瞬时转染一般用于基因产物的短期表达、基因敲除、蛋白质的小规模合成。相对于瞬时转染,稳定转染表达适用于长期的药理学研究遗传调控机制研究及大规模的蛋白质合成,需要大量的周期,因此更费力成本投入高。目前,在进行哺乳动物细胞蛋白表达蛋白时,因为细胞培养技术的进步和人们对瞬时转染的不断探索,人们已经可以对一些常用细胞进行悬浮培养,实现了瞬时转染对重组蛋白的大规模合成,节省了时间和成本。

细胞转染一般步骤

以24孔板进行细胞瞬时转染表达为例,全程操作均为无菌状态,以免造成细胞污染

1)转染前准备,细胞株或者直接培养后的细胞用胰蛋白酶消化后计数,铺板,培养基为含有1ml血清,不含抗性的正常培养基。

2)针对每孔细胞,用50-100ul无血清培养基稀释0.8-1.6ug的质粒,并混匀

3)针对每孔细胞,用50-100ul无血清培养基稀释4ul左右的转染试剂,混匀室温防止5min

4)将第二第三步的溶液混匀室温防止20-30min

5)用PBS冲洗细胞,在用无血清培养基冲洗细胞,在加入0.5ml的无血清培养基

6)将四步骤得到的混合物加入到每孔中,轻摇混匀后放入37℃,5%的二氧化碳培养箱中培养5-6h

7)将无血清培养基换为血清培养基(10%胎牛血清)孵育24-96h后检测结果。稳定表达,在转染24h后传代新鲜培养液中,48h后加入抗性,稳定表达需要数周时间。

 

哺乳动物细胞瞬时转染流程图

影响转染效率因素

1. 转染试剂

瞬时转染和稳定转染可以选择不同的转染试剂,转染试剂的选择又可以根据已经发表的文献。已经有很多细胞株被成功转染,通过文献资料可以参考适的转染试剂,当然也要根据不同的实验需求选择。此外,不同的转染方法也要选择不同的试剂,一般要求是转染试剂要低毒,高效,廉价易得。

2. 转染方法

转染方法分为两类:瞬时转染和稳定转染。转染方法的选择对转染结果影响也很大,。根据细胞的性质及不同的操作手法,摸索转染条件。瞬时转染和稳定转染都需要优化DNA 与转染试剂比例, 细胞培养及检测时间。一些传统的转染技术,如磷酸钙法,电穿孔法,脂质体转染法都各有利弊,关于各种转染方法的比较和原理,可参见细胞培养方法的比较。

3. 细胞状态

一般传代数小于50代以下的细胞即能保证基因型不变。瞬时转染合适的细胞是达到对数生长期的细胞,此时细胞生长旺盛,容易被转染。同一种系的细胞株,在不同实验室不同培养条件下,其生物学性状都会产生不同改变,从而导致其转染特性也发生变化。因此,针对这种转染效率降低的情况,应转用新鲜培养的细胞转染达到好的结果。

4. 载体构建

基因产物对细胞不能有毒害作用,瞬时转染难以进行。转染载体的构建选择可调控,强度合适的启动子很重要,可以做空载体或相同载体的其他基因为对照排除毒性对细胞的影响。 病毒载体对特定宿主细胞感染效率较高,但不同病毒载体有其特定的宿主,有的还要求特定的细胞周期,如逆转录病毒需侵染分裂期的宿主细胞。

5. 其他要求

(1)细胞培养基

培养基是瞬时转染的基本要素。不同细胞选择不同的培养基,血清和其他添加物。使用的转染试剂要参考其说明书。培养物一定要避免细菌,支原体真菌的污染。

(2)血清

血清是一种包含生长因子及其它辅助因子的成分不明确添加物,对不同细胞的生长作用有很大的差别。血清质量的变化直接影响细胞生长,因此也会影响细胞转染效率,不同批次购买的血清质量也会存在差别。对于传统的转染方法要求在无血清培养基条件下转染,血清被认为会降低瞬时转染的效率。针对现有人们常用的的转染试剂来说,血清的存在已不会影响转染效率,甚还有助于提高转染效率。在转染过程中*可以使用血清,针对RNA 转染,消除血清中潜在的核糖核酸酶污染要格外关注。且血清比较珍贵,胎牛血清,马或牛血清都常被用到,价格也不尽相同,根据自身选择。

(3)细胞密度

细胞密度对转染效率也有一定影响,一般转染时贴壁细胞密度为50-90%,具体要根据选用的转染试剂的说明书。不同的转染试剂适的细胞密度各不相同,即使同一种试剂,也会因不同的细胞类型或应用而异。

例如阳离子脂质体具有微量的细胞毒性而要更高的细胞铺板密度或更多的悬浮细胞数, 尽量在细胞适的生理状态下转染,以求好的转染效果。

(4)DNA 质量

针对一般常用的转染技术都是基于电荷吸引的原理转染的,如果DNA的纯度不高,存在其他杂质,如盐离子等都会影响转染复合物的形成。针对市面上现有的超纯质粒抽提的试剂盒,能达到非常高的纯度效果,从而可以避免DNA纯度的影响。